2020.07.30 (木)
Dr. Suzuki Wisconsin Univ
https://cancerbiology.wisc.edu/staff/suzuki-phd-aussie/
Q1: どんな細胞をメインで観察されていますか？
A: 主に、ヒトを含む哺乳類培養細胞とヒトオーガノイドを使用している。また、温度管理が必要な酵母のイメージングにも使用している。
Q2: 現在の研究のゴールは何でしょうか？
A: 我々の研究室では、細胞がどのように複製された遺伝子情報である染色体を均等に娘細胞に分配するメカニズムの解明を目指している。我々は、様々な多種多様な光学顕微鏡を駆使して、研究を行っている。例えば、横河超高解像度SORA顕微鏡、ライトシート顕微鏡、STED超高解像度顕微鏡や共焦点顕微鏡である。また、染色体分配を制御する張力解析のために張力バイオセンサーの開発や、キネトコアの微細構造解析のため、超高解像度顕微鏡法の１つである拡大顕微鏡法(Expansion Microscopy)の新規手法の開発を精力的に行っている。
Q3: タイムラプスイメージングをされる際はどのようなアプリケーション/顕微鏡観察法で行いますか？
A: 細胞分裂期は、細胞周期の中でもっともダイナミックにクロマチンが変化するため超高解像度高速ライブセルイメージングや長期のライブセルイメージングに使用している。また、様々な薬剤が、細胞遊走や浸潤に与える影響を解析するためにも使用している。
Q4: 最近の気になるトピックはありますか？
A: 我々の研究室では、細胞分裂機の制御機構の解明を目指している。染色体分配は、微小管と染色体上に形成させる巨大なタンパク質複合体であるキネトコア(動原体)と微小管が結合し、張力を発生することで、染色体を娘細胞に分配する。さらに、最近の研究で、キネトコアの張力が、分裂機チェックポイントの制御に関わることもわかっている。しかしながら、まだ、キネトコアの張力の発生・伝達機構は、解明されていない。それは、張力は常に変動し、また、張力そのものがとても小さいため(pNスケール)、張力の検出が、技術的に困難なためである。張力に必須な微小管の脱重合が温度や二酸化炭素濃度に敏感であるため、東海ヒットの培養器のようなイメージング中に安定した培養環境下で研究を行う必要がある。我々の研究室では、張力を検出できるバイオセンサーの開発を行っており、東海ヒット製品と組み合わせることで、染色体分配を制御する張力の作用機序解明を目指している。
Q1: 東海ヒット製品の気に入っている、もしくは最も使いやすい製品特性は何ですか？
A: 東海ヒット製品の利点は、製品の安定性である。新旧の培養器を所有しているが、どちらもとても使い勝手が良く、安定した細胞生育環境を提供してくれる。特に、最新のモデルは、フィードバックコントロール機能とほぼ全てのプレートやディッシュ、スライドに対応しているのが特に気に入っている。
Q2: 東海ヒット製品の実用性、機能、サポート、サービス等についてのどう思われますか？
A: 上記の質問でも答えたが、東海ヒットの培養器は、非常に安定しており、とても簡単に使用することができる。我々の研究室では、48時間を超えるライブセルイメージングを行うことも多いが、その長期のイメージングにおいても細胞の生育がとても良い。細胞分裂は二酸化炭素濃度や温度の変化に敏感で、2度ほど温度が低下するだけでも、有意に細胞分裂期に有する時間が伸びてしまう。そのため、安定した培養環境を提供する東海ヒットの培養システムは実験に欠かせないものとなっている。また、ウィスコンシン大学マディソン校だけでも、20機を超える東海ヒットシステムが異なる学部やイメージングコアで稼働している。東海ヒットのシステムは、我々の研究室だけでなく、多くの研究室の使用者から、高い評価を受けている。また、培養器そのもののクオリティーだけでなく、カスタマーサポートの良さは、特筆すべき点だと思う。特に、海外製品は、問題が発生した際のカスタマーサポートの弱さを心配するが、東海ヒットは英語でのコミュニケーションも可能であり、さらに、早急な対応をいつもしてもらっている。
Dr. Suzuki Wisconsin Univ
https://cancerbiology.wisc.edu/staff/suzuki-phd-aussie/
Q1: What kind of samples do you usually work with?
A: Mammalian tissue culture cells, human organoids, and budding yeast (only for temperature control).
Q2: What is your goal in the research that you are working on right now?
A: Our laboratory focuses on the molecular mechanism of how cells achieve faithful cell division. We use variety of light microscopes, which include Yokogawa SORA super-resolution confocal, D4 lattice light sheet, Mizar TILT, Leica STED, and Nikon A1 confocal microscopes to study cell division cycle. We also developed tension biosensors to detect force for chromosome movements and novel ExM (expansion microscopy) methods to exceed optical resolution limit to study structural deformation of proteins involved in chromosome segregation.
Q3: What kind of application/microscopy do you use during the time-lapse imaging?
A: Live super-spatiotemporal resolution imaging for cell cycle analysis. Long-time lapse imaging for cell cycle (> 48 hrs). Migration assay using flow slides.
Q4: What were the subjects/topics that attracted your attention most recently in your filed?
A: Chromosome segregation is mediated by force at the interface of kinetochore-microtubule attachment on mitotic chromosomes. Tension at kinetochores is also involved in regulation of checkpoint functions during chromosome segregation, which monitor errors. However, tension at kinetochores is technically challenging to study since it is highly dynamic and very tiny (pN scale). It requires to develop a sensitive detector, such as a biosensor, and provide stable environment like a Tokai Hit incubator. We are hoping to develop it and dissect functions of force at kinetochores in ensuring accurate chromosome segregation.
Q1: What is your favorite part about the Tokai Hit system that you own?
A: Tokai Hit provides high quality products. I have both old and latest Tokai Hit stage top incubator systems. Both systems are very user friendly and provide stable environment for live cell imaging. I especially like that the latest model has the feedback control function and all-in-one system, which fits any specimens (35 mm dish, chamber slide/coverslips, and plates) without any additional cost.
Q2: How do you describe Tokai Hit product performance, features, and services to you?
A: As I mentioned above, Tokai Hit incubators are very stable and easy set-up. Cells in incubators grow very healthy during long-term imaging (we frequently do > 48 hours time-lapse). Cell division is very sensitive for environment of incubators (temperature and CO2). It is very critical to use of the stable incubator system for our research, and Tokai Hit incubator meets our desires. In addition to my laboratory, approximately 20 Tokai Hit incubators are working in our university, and all users like the quality of Tokai Hit incubators. This indicate that the Tokai Hit incubator supports broad research fields. Note that another advantage of Tokai Hit is high quality customer support. Oversea users often concern product supports, but in my experience, Tokai Hit could communicate in English and always provide prompt response to solve our problems.
Dr. Suzuki Wisconsin Univ
https://cancerbiology.wisc.edu/staff/suzuki-phd-aussie/
Q1: What kind of samples do you usually work with?
A: Mammalian tissue culture cells, human organoids, and budding yeast (only for temperature control).
Q2: What is your goal in the research that you are working on right now?
A: Our laboratory focuses on the molecular mechanism of how cells achieve faithful cell division. We use variety of light microscopes, which include Yokogawa SORA super-resolution confocal, D4 lattice light sheet, Mizar TILT, Leica STED, and Nikon A1 confocal microscopes to study cell division cycle. We also developed tension biosensors to detect force for chromosome movements and novel ExM (expansion microscopy) methods to exceed optical resolution limit to study structural deformation of proteins involved in chromosome segregation.
Q3: What kind of application/microscopy do you use during the time-lapse imaging?
A: Live super-spatiotemporal resolution imaging for cell cycle analysis. Long-time lapse imaging for cell cycle (> 48 hrs). Migration assay using flow slides.
Q4: What were the subjects/topics that attracted your attention most recently in your filed?
A: Chromosome segregation is mediated by force at the interface of kinetochore-microtubule attachment on mitotic chromosomes. Tension at kinetochores is also involved in regulation of checkpoint functions during chromosome segregation, which monitor errors. However, tension at kinetochores is technically challenging to study since it is highly dynamic and very tiny (pN scale). It requires to develop a sensitive detector, such as a biosensor, and provide stable environment like a Tokai Hit incubator. We are hoping to develop it and dissect functions of force at kinetochores in ensuring accurate chromosome segregation.
Q1: What is your favorite part about the Tokai Hit system that you own?
A: Tokai Hit provides high quality products. I have both old and latest Tokai Hit stage top incubator systems. Both systems are very user friendly and provide stable environment for live cell imaging. I especially like that the latest model has the feedback control function and all-in-one system, which fits any specimens (35 mm dish, chamber slide/coverslips, and plates) without any additional cost.
Q2: How do you describe Tokai Hit product performance, features, and services to you?
A: As I mentioned above, Tokai Hit incubators are very stable and easy set-up. Cells in incubators grow very healthy during long-term imaging (we frequently do > 48 hours time-lapse). Cell division is very sensitive for environment of incubators (temperature and CO2). It is very critical to use of the stable incubator system for our research, and Tokai Hit incubator meets our desires. In addition to my laboratory, approximately 20 Tokai Hit incubators are working in our university, and all users like the quality of Tokai Hit incubators. This indicate that the Tokai Hit incubator supports broad research fields. Note that another advantage of Tokai Hit is high quality customer support. Oversea users often concern product supports, but in my experience, Tokai Hit could communicate in English and always provide prompt response to solve our problems.